Bioingeniería Molecular y Celular: Módulo II 2026
Contorno da seção
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La unidad curricular se rige por un sistema de ganancia de curso con posibilidad de exoneración total del examen. La evaluación se basa en la realización de 4 informes individuales, correspondientes a las distintas secciones experimentales del curso. Cada informe se califica en una escala de 0 a 100%.
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La participación activa y el compromiso en clase podrán sumar hasta un 10% adicional (sin superar el 100% total).
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Se requiere un 75% de asistencia a las instancias prácticas presenciales (al menos 9 de 12) para aprobar el curso.
El examen final será exonerado cuando:
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Los 4 informes sean entregados en fecha,
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Cada informe obtenga más de 25%, y
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El promedio de los 4 informes sea superior a 50%.
Se gana el derecho a rendir examen final cuando:
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Cada informe supere el 25%, y
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El promedio final sea mayor a 25% pero menor o igual a 50%.
En esta situación el curso se aprueba (“sin concepto”) y el estudiante deberá rendir un examen oral, enfocado en la discusión e interpretación de los resultados obtenidos durante las prácticas.
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A lesson in failure – Jennifer Lanni (Science, 2021)
Un ensayo breve sobre una experiencia docente en la que un experimento falla y se convierte en una oportunidad para que los estudiantes reflexionen sobre cómo funciona realmente la investigación científica. El texto invita a pensar en el papel del error, la interpretación de datos y la resiliencia en la práctica de la ciencia.
Un estudio que analiza cómo la interacción de estudiantes universitarios con ChatGPT se relaciona con el desarrollo del pensamiento crítico. Los resultados sugieren que el impacto de estas herramientas depende en gran medida de cómo los estudiantes utilizan la tecnología para analizar información y reflexionar sobre ella.
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Durante el desarrollo de las actividades prácticas, es fundamental mantener una conducta responsable que garantice la seguridad individual y colectiva, así como el correcto desarrollo del trabajo experimental.
El uso de túnica es obligatorio durante toda la permanencia en el laboratorio.
El uso de teléfonos celulares debe limitarse estrictamente a fines académicos. No está permitido manipular el celular con guantes puestos, ya que esto puede provocar contaminación cruzada. En caso de necesitar utilizarlo, deberán retirarse los guantes previamente.
Se deben seguir en todo momento las indicaciones del docente, mantener el área de trabajo ordenada y limpia, y manipular los reactivos y equipos con cuidado. Está prohibido comer, beber o almacenar alimentos dentro del laboratorio.
Las actividades prácticas culminan únicamente cuando el área de trabajo y los materiales utilizados quedan limpios, ordenados equivalentes a las condiciones iniciales.
El cumplimiento de estas normas es indispensable para asegurar un entorno de trabajo seguro y adecuado para todos.
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Sección I - Herramientas de análisis y diseño de ácidos nucleicos para la edición mediante CRISPR-Cas9
El práctico comenzará con un módulo de trabajo en computadora dedicado al diseño de sgRNAs y otros elementos necesarios para la edición génica con CRISPR-Cas9.
Para esta actividad se utilizarán las laptops disponibles en el laboratorio de prácticos. No obstante, quienes lo prefieran pueden traer su propia computadora portátil para realizar las actividades.
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El informe a desarrollar es de carácter individual. Deberán subir su documento en formato .doc o .pdf, respondiendo a la consigna que encontrarán en el apartado correspondiente a la tarea.
El período de entrega estará habilitado desde el 24 de marzo hasta el 14 de abril a las 23:59 h.
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Aberto: terça-feira, 24 mar. 2026, 17:00
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La sección II del módulo experimental continúa enfocado en la síntesis y preparación de los componentes necesarios para la edición génica mediante CRISPR-Cas9.
Durante esta actividad, se generará un ADN molde a partir de oligonucleótidos, el cual será utilizado para la síntesis de sgRNA mediante transcripción in vitro. Posteriormente, se realizarán etapas de purificación, cuantificación y control de calidad de los ácidos nucleicos obtenidos. Finalmente, se preparará el ADN blanco mediante PCR del gen mCherry y se evaluarán los productos generados mediante electroforesis en gel de agarosa, integrando así los distintos componentes necesarios para ensayos de corte in vitro.
A partir de esta instancia, se realizarán preguntas múltiple opción al inicio del práctico, referidas a la actividad anterior, a las tareas del día y a la ficha de seguridad.
No olviden traer túnicas si tienen a disposición.
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El período de entrega estará habilitado desde el 28 de abril hasta el 5 de mayo a las 23:59 h.
Sugerencias para la redacción de informes
Escriba el informe utilizando sus propias palabras. Este ejercicio es fundamental para consolidar el aprendizaje y desarrollar habilidades de escritura científica. Intente emplear el mínimo número de palabras necesario para expresar con claridad la idea que desea transmitir, aplicando economía de lenguaje. Utilice términos precisos y evite repetir información que ya se encuentra descripta en el manual del práctico.
Desarrollo del informe
Describir los resultados implica relatar de forma clara y ordenada lo que se observó en cada experimento. Esta descripción debe centrarse en las observaciones obtenidas, sin incluir interpretaciones, juicios sobre posibles errores o explicaciones alternativas, ya que estos aspectos corresponden a la discusión.
Discutir los resultados implica analizar lo observado en relación con lo esperado. Esto incluye comparar los resultados obtenidos con los resultados esperados, proponer posibles causas para las diferencias observadas y sugerir métodos alternativos o mejoras experimentales cuando corresponda.
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Aberto: terça-feira, 28 abr. 2026, 10:00
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Aberto: terça-feira, 28 abr. 2026, 10:00
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La sección III del módulo experimental se enfoca en la obtención de uno de los componentes centrales del sistema CRISPR-Cas9: la proteína nucleasa.
Durante esta actividad, se inducirá la expresión de la proteína SaCas9 recombinante en un sistema bacteriano, para luego proceder a su extracción y purificación mediante cromatografía de afinidad basada en su tag de histidinas. A lo largo del proceso, se obtendrán distintas fracciones (lisado, soluble, percolado, lavados y eluato) que permitirán evaluar la eficiencia de la expresión y purificación.
Posteriormente, se analizarán las muestras mediante electroforesis en gel de poliacrilamida (SDS-PAGE) y tinción con azul de Coomassie, lo que permitirá visualizar la presencia, tamaño y grado de pureza de la proteína obtenida. De esta manera, se integran los conceptos de expresión heteróloga, purificación y análisis de proteínas en el contexto de la generación de herramientas funcionales para edición génica.
No olviden traer túnicas si tienen a disposición.

